Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

Исследованию по оценке антибиотикочувствительности подлежат чистые культуры микроорганизмов или материал изолированных колоний с плотных питательных сред после первичного посева образца клинического материала, в последнем случае необходимо параллельно провести идентификацию культуры.

При обнаружении на плотных питательных средах после первичного посева смешанной культуры исследовать антибиотикочувствительность до идентификации и оценки этиологической значимости отдельных микроорганизмов нецелесообразно.

Прямое определение чувствительности с использованием клинического материала (без выделения чистой культуры) возможно только в исключительных случаях при условии подтверждения однородности культуры и высокой степени обсемененности при окраске по Граму, причем исследование нужно повторить после выделения чистой культуры микроорганизма.

Следует уделять особое внимание определению чувствительности микроорганизмов, относящихся к таксономическим группам, для которых характерна высокая частота распространения приобретенной резистентности.


У микроорганизмов, проявляющих универсальную чувствительность к каким-либо АБП, то есть когда случаев резистентности не описано (например, у Streptococcus pyogenes все штаммы чувствительны к пенициллину), проводить определение чувствительности к этим препаратам в повседневной практике нецелесообразно.

Факты выявления резистентности у микроорганизмов, для которых этот феномен ранее не был описан в научной литературе, следует оценивать с крайней осторожностью, а полученные штаммы рекомендуется отправлять в референтные лаборатории и в специализированные учреждения для проверки.

Не следует в практических целях исследовать микроорганизмы, для которых методы определения чувствительности в настоящее время не стандартизованы и отсутствуют критерии интерпретации результатов. Результаты, полученные в данном случае, не могут служить основанием для назначения антибактериального препарата, если соответствующая нозологическая форма не приведена в утвержденной инструкции по его применению. Исследование чувствительности микроорганизмов к антибиотикам и химиотерапевтическим препаратам проводят стандартными унифицированными методами, регламентированными официальными инструкциями, в частности методическими указаниями по определению чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам (МУК 4.12.1890-04).


Источник: www.rosmedlib.ru

Диско-диффузионный метод

На поверхность плотной питательной среды, засеянной сплошным газоном исследуемой культурой, накладывают не более 6 дисков, пропитанных антибиотиками, на расстоянии не менее 2 см друг от друга. Регистрация результатов проводится через 18-24 часов инкубирования в термостате по диаметру зоны отсутствия роста вокруг дисков с антибиотиками. Наличие роста вокруг диска свидетельствует о нечувствительности данного микроба к антибиотику. Для интерпретации результатов используются специальные таблицы.

Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

Рисунок 1. Определение чувствительности

микроорганизмов диско-диффузионным методом:

1 – микроорганизм чувствителен к антибиотику;

2 – микроорганизм умеренно резистентен к антибиотику;

3 – микроорганизм устойчив к антибиотику.

Метод Е-тестов

Принцип метода. Определение чувствительности микроорганизма проводится аналогично тестированию диско-диффузионным методом. Отличие состоит в том, что вместо диска с антибиотиком используют полоску Е-теста, содержащую градиент концентраций антибиотика от максимальной к минимальной. В месте пересечения эллипсовидной зоны подавления роста с полоской Е-теста получают значение минимальной подавляющей концентрации (МПК).


Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

Рисунок 2. Определение чувствительности микроорганизмов с помощью Е-тестов

Метод серийных разведений в бульонной среде

В пробирках, содержащих 1 мл Мюллер-Хинтон бульона, готовят серийные двукратные разведения антибактериального препарата, например 100 мкг/мл – 1-я, 50 мкг/мл – 2-я, 25 мкг/мл – 3-я, 12,5 мкг/мл – 4-я и т.д. Затем в каждую пробирку вносят 0,1 мл испытуемой бактериальной суспензии. Одновременно ставят контроль роста (1 мл Мюллер-Хинтон бульона и 0,1 мл суспензии бактерий). Посевы инкубируют при 37°С в течение 18-24 ч., после чего отмечают результаты. Отсутствие помутнения среды свидетельствует о задержке роста бактерий в присутствии данной концентрации препарата.

Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

Рисунок 3. Определение значения МПК методом разведения в жидкой питательной среде

Минимальная подавляющая концентрация (МПК) – наименьшая концентрация антибиотика (в мкг/мл или мг/л), которая in vitro полностью подавляет видимый рост бактерий.

2► Определение чувствительности разных штаммов стафилококков к антибиотикам методом стандартных дисков


Антибиотик

Зона подавления роста, мм

Характеристика штамма

1.

2.

3.

4.

5.

6.


Исследуемая культура является чувствительной к __________________________________________________

умеренно устойчивой к _________________________________________________________________________,

устойчивой к _________________________________________________________________________________.

Достоинства метода:____________________________________________________________________________

Недостатки метода:____________________________________________________________________________

3►Определение минимальной подавляющей концентрации (МПК) пенициллина методом серийных разведений.

Вывод: МПК пенициллина для исследуемого штамма составляет _____________________________________

Достоинства метода:____________________________________________________________________________

Недостатки метода:____________________________________________________________________________

4►Выявление и регистрация антагонистического действия разных видов бактерий.

На чашку с МПА штрихом по диаметру засевается микроб-антагонист и перпендикулярно к нему тест-штаммы. Учет результатов проводится через сутки после посева. Наличие и степень антагонистического действия определяют по величине зон задержки роста тест-культур.


Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

Штриховой посев________________________

Вывод: наибольшее антагонистическое действие выявлено к тест-штаммам (укажите виды) _____________________________________________________________________________________________

ЗАНЯТИЕ № 8

ТЕМА: ИТОГОВОЕ ЗАНЯТИЕ ПО ТЕМЕ: «ИСТОРИЧЕСКИЕ ЭТАПЫ РАЗВИТИЯ МИКРОБИОЛОГИИ, МОРФОЛОГИЯ, ФИЗИОЛОГИЯ И ГЕНЕТИКА МИКРООРГАНИЗМОВ».

ПЕРЕЧЕНЬ КОНТРОЛЬНЫХ ВОПРОСОВ

  1. Формы и размеры истинных бактерий. Характеристика шарообразных, палочковидных и извитых форм истинных бактерий.

  2. Структура бактерий. Основные отличия прокариотной клетки от эукариот.

  3. Клеточная стенка грамположительных и грамотрицательных бактерий.


  4. Типы микроскопических препаратов. Техника приготовления фиксированных препаратов.

  5. Техника микроскопии в световом микроскопе. Изучение морфологии микроорганизмов в электронном микроскопе.

  6. Тинкториальные свойства микробов. Красители. Простые способы окраски фиксированных препаратов.

  7. Принципы классификации патогенных прокариот (Берджи, 2001).

  8. Защитные приспособления у микроорганизмов. Споры, стадии и условия образования спор, биологическое значение.

  9. Капсулы бактерий, их значение.

  10. Жгутики, их строение. Реснички. Секс-пили.

  11. Сложные способы окраски. Техника окраски по Граму, Цилю-Нельсену, Бурри-Гинсу, Нейссеру.

  12. Методы исследования микроорганизмов в живом состоянии. КОН-тест. Принцип метода.

  13. Спирохеты. Систематическое положение и морфология спирохет. Особенности ультраструктуры и химического состава. Методы исследования.

  14. Актиномицеты, морфология, ультраструктура, химический состав. Патогенные виды. Роль актиномицетов в природе и медицине. Методы выявления.

  15. Таксономия хламидий. Морфология, структура, способы выявления. Цикл развития хламидий.

  16. Риккетсии, морфология, ультраструктура, химический состав. Патогенные виды.


  17. Микоплазмы. Классификация. Филогенез. Способы выявления.

  18. Дефектные формы микробов: протопласты, сферопласты, L-формы.

  19. Питание бактерий. Питательные вещества – источники углерода и азота. Классификация бактерий по типам питания Аутотрофы и хемоорганотрофы

  20. Факторы роста и их источники. Источники минеральных элементов.

  21. Способы и механизмы переноса питательных веществ через мембрану.

  22. Энергетические потребности бактерий. Пути получения энергии у аутотрофов (фотосинтез, хемосинтез). Источники и пути получения энергии у хемоорганотрофов.

  23. Аэробный и анаэробный типы биологического окисления у бактерий. Аэробные, анаэробные, факультативно анаэробные и микроаэрофильные бактерии. Способы создания анаэробных условий.

  24. Задачи, этапы, преимущества и недостатки бактериологического (культурального) метода исследования.

  25. Рост и размножение микроорганизмов. Способы размножения. Бинарное (простое) деление, механизм. Размножение бактериальных популяций.

  26. Принципы и методы культивирования бактерий. Питательные потребности микробов.

  27. Питательные среды для культивирования бактерий. Требования к питательным средам. Классификация питательных сред.


  28. Условия и техника культивирования бактерий. Техника посева на питательные среды. Закономерности и характер роста бактерий на плотных и жидких питательных средах.

  29. Способы выделения чистых культур аэробных и анаэробных бактерий.

  30. Свойства микроорганизмов, используемые для идентификации выделенных культур.

  31. Ферменты бактерий, классификация. Способы изучения биохимических свойств микроорганизмов. Практическое использование биохимической активности в идентификации бактерий

  32. Определение сахаролитических свойств, состав сред Гисса; определение протеолитических свойств, определение каталазной и оксидазной активности.

  33. Принцип работы и особенности применения приборов автоматической идентификации бактериальных культур (гемокультиватор, автоматический анализатор).

  34. Особенности культивирования риккетсий и хламидий.

  35. Бактериофаги (фаги). История открытия. Морфология, структурные особенности, химический состав и свойства фагов.

  36. Вирулентные фаги. Фазы взаимодействия с бактериальной клеткой. Результаты взаимодействия фага и клетки. Умеренные фаги. Профаг. Явление лизогении. Фаговая конверсия.

  37. Методы выделения и титрования бактериофагов на плотных и жидких питательных средах.Применение фагов в микробиологии и медицине. Фагодиагностика и фаготипирование.


  38. Наследственность. Организация генетического аппарата у бактерий (нуклеоид, плазмиды, Is-последовательности, транспозоны).

  39. Принципы функционирования бактериального генома. Организация оперона. Генотип и фенотип.

  40. Плазмиды, классификация, структура и свойства плазмид. R-плазмида, особенности структуры и функции. Плазмиды бактериоциногении.

  41. Изменчивость микробов. Модификации у бактерий, значение, основные проявления и свойства (ненаследственный характер, адаптивность, высокая частота прямых и обратных изменений, множество индуцирующих факторов).

  42. Генотипическая изменчивость. Мутации и их классификация. Мутагены. Фенотипические проявления мутаций. Судьба мутантов. Диссоциация у бактерий. Влияние отбора. Система репарации повреждений генома.

  43. Рекомбинационная изменчивость. Механизмы образования комбинированных геномов. Частота изменений отдельных признаков. Трансформация, трансдукция, конъюгация.

  44. Практическое значение знаний о генетике микробов. Принципы генетического картирования.

  45. Методы генетического анализа (молекулярная гибридизация, полимеразная цепная реакция, блотинг, секвенирование).

  46. Понятие о генной инженерии и использование ее методов в микробиологии и биотехнологии. Получение и применение генно-инженерных вакцин и цитокинов.

  47. Противомикробные мероприятия. Влияние экологических факторов на микробы. Действие физических факторов (температуры, высушивания, излучений, ультразвука, осмотического давления). Действие химических факторов.

  48. Цели, способы, средства и объекты стерилизации и дезинфекции в медицинской и микробиологической практике. Контроль качества дезинфекции. Контроль стерилизации и стерильности. Способы проведения.

  49. Антисептика. Определение. Антисептические средства, требования, происхождение, свойства, группы, механизмы действия на микробы. Типы антисептики. Терапевтическая антисептика. Профилактическая антисептика.

  50. Химиотерапевтические препараты. Свойства. Основные группы химиопрепаратов. Механизмы действия на бактерии. Понятие об избирательности и «мишенях» действия.

  51. Органические и неорганические соединения металлов и металлоидов. Сульфаниламидные препараты. Препараты нитрофуранового ряда. Противогрибковые, противовирусные, противопаразитарные химиопрепараты.

  52. Антибиотики. Определение. Продуценты антибиотиков. Синтетические и полусинтетические антибиотики.

  53. Основные группы антибиотиков по химической структуре. Бета-лактамные антибиотики Тетрациклины. Аминогликозиды. Макролиды и азолиды. Анзамицины (рифампицины). Левомицетин. Фторхинолоновые антибиотики. Линкомицин. Полимиксины. Гликопептиды

  54. Классификация антибиотиков про механизму действия на бактериальную клетку.

  55. Механизмы устойчивости микроорганизмов к антибактериальным препаратам.

  56. Методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам и другим химиопрепаратам. Техника постановки, учета и оценки чувствительности методом дисков, Е-теста, серийных разведений.

ЗАНЯТИЕ № 9

ТЕМА: ЭКОЛОГИЯ БАКТЕРИЙ. ИНФЕКЦИЯ. ПАТОГЕННЫЕ МИКРООРГАНИЗМЫ. ТОКСИНЫ МИКРОБОВ. БИОЛОГИЧЕСКИЙ (ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ) МЕТОД.

ПЕРЕЧЕНЬ КОНТРОЛЬНЫХ ВОПРОСОВ

  1. Основные понятия экологической микробиологии (популяция, биотоп, микробиоценоз, экосистема, биосфера). Экологические связи микробов (симбиоз, комменсализм, нейтрализм, конкуренция, паразитизм, хищничество).

  2. Микрофлора тела человека. Нормальная (резидентная) микрофлора человека. Аутохтонная и аллохтонная, пристеночная и просветная микрофлора. Формирование и развитие нормальной микрофлоры. Функции нормальной микрофлоры: противоинфекционная, метаболическая, иммунобиологическая, антитоксическая.

  3. Дисмикробиоценоз (дисбактериоз), причины, виды, принципы коррекции.

  4. Понятие об инфекции. Определение, общая характеристика. Отличия инфекционных болезней от неинфекционных.

  5. Роль микроорганизма в инфекционном процессе. Инфицирующая доза. Способы заражения. Входные ворота. Патогенность и вирулентность. Генетический контроль патогенности и вирулентности. Факторы, повышающие и снижающие вирулентность микробов.

  6. Факторы патогенности. Методы определения вирулентности, единицы. Облигатно-патогенные и условно-патогенные микроорганизмы.

  7. Токсичность и токсигенность микроорганизмов. Эндотоксины, свойства, получение, применение. Экзотоксины, свойства, получение, единицы измерения. Типы экзотоксинов, механизм действия.

  8. Роль макроорганизма в развитии и течении инфекционных болезней. Наследственные факторы. Анатомо-физиологическое состояние организма. Роль условий жизни в развитии и течении инфекционных болезней. Природные факторы. Социальные факторы.

  9. Классификация инфекционных процессов по тяжести, характеру возбудителя, по источнику инфекции, способу передачи возбудителя и механизму заражения, по распространенности. Классификация инфекционных процессов по локализации микробного очага, длительности течения и кратности заражения.

  10. Динамика инфекционного процесса, его особенности.

  11. Биологический (экспериментальный) метод исследования, этапы, оценка. Лабораторные животные. Способы заражения.

ЛАБОРАТОРНАЯ РАБОТА

1► Изучения нормальной микрофлоры.

А) Посев для изучения нормальной микрофлоры кожи рук на среду Эндо и кровяной агар методом реплик.

Принцип метода: стерильные кусочки фильтровальной бумаги 1х1 см в чашке Петри увлажнить стерильным физ. раствором. Стерильным пинцетом поместить кусочек бумаги на исследуемую поверхность кожи рук на 0,5 мин. Поместить бумагу на поверхность плотной питательной среды (отпечаток) на 1 мин. Бумагу удалить. Чашки с отпечатками инкубировать при 370С, 24-48 часов.

В) Провести учет посева микрофлоры, приготовить препараты из разных типов колоний, окрасить по Граму, микроскопировать (в демонстрационных посевах).

Учет посева микрофлоры:

биотоп

количество и характер колоний на кровяном агаре

количество и характер колоний на среде Эндо

Микроскопия препаратов:

Препарат ______________

_______________________

Окраска _______________

_______________________

Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

Препарат ______________

_______________________

Окраска _______________

_______________________

Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

2► Оценка адгезивности E.coli по их способности к адсорбции на поверхности эритроцитов

Принцип метода: К суспензии эритроцитов добавляют испытуемую культуру микроорганизмов. После инкубации готовят мазки, окрашивают и под микроскопом определяют среднее количество бактерий, адсорбировавшихся на одном эритроците.

Эритроциты в данном случае используются в качестве модели клетки восприимчивого микроорганизма.

Определение чувствительности бактерий к антибактериальным препаратам

Окраска по ______________

Увеличение _____________

1 — эритроцит

2 — E.coli

3► Определение ферментов инвазивности у стафилококков

1. Плазмокоагулаза

Принцип метода: В пробирку, содержащую цитратную плазму крови кролика, вносится испытуемая культура. После инкубации в термостате учитывается результат. При положительном результате плазма свертывается (коагулирует).

S. aureus

Штамм № 1

Штамм № 2

Результат

2. Фибринолизин

Принцип метода: В пробирку с фибрином (отмытый от эритроцитов сгусток крови) вносят испытуемую культуру. После инкубации в термостате учитывается результат. При положительном результате сгусток растворяется.

S. aureus

Штамм № 1

Штамм № 2

Результат

3. Гиалуронидаза

Принцип метода: В пробирку с гиалуроновой кислотой (ГУК) вносят испытуемую культуру. После инкубации в термостате добавляют реактив, вызывающий свертывание ГУК и учитывают результат. При положительном результате (вследствие расщепления ГУК) сгустка не образуется.

S. aureus

Штамм № 1

Штамм № 2

Результат

4. Лецитовителлаза (лецитиназа)

Принцип метода: выделенные культуры стафилококка засевают на желточно-солевой агар, который содержит 7,5% хлорида натрия и желточную суспензию. При положительном результате вокруг колоний вирулентных стафилококков образуется радужный ореол вследствие расщепления лецитина, содержащегося в желтке куриного яйца.

S. aureus

Штамм № 1

Штамм № 2

Результат

Вывод: (перечислите ферменты вирулентности каждого из двух изученных штаммов) _____________________________________________________________________________________________

_____________________________________________________________________________________________

Бактериальные токсины

Токсичность __________________________________________________________________________________

Токсигенность _________________________________________________________________________________

Эндотоксин ___________________________________________________________________________________

Эндотоксический шок ___________________________________________________________________________

Практическое применение эндотоксинов:

1.____________________________________________________________________________________________

2.____________________________________________________________________________________________

Экзотоксин ___________________________________________________________________________________

Анатоксин ____________________________________________________________________________________

Схема получения экзотоксина и анатоксина.

1.____________________________________________________________________________________________

2.____________________________________________________________________________________________

3.____________________________________________________________________________________________

4.____________________________________________________________________________________________

Практическое применение анатоксинов:

1.____________________________________________________________________________________________

2.____________________________________________________________________________________________

3.____________________________________________________________________________________________

Источник: studfile.net

   УТВЕРЖДАЮ  Главный государственный  санитарный врач  Российской Федерации,  Первый заместитель  Министра здравоохранения  Российской Федерации  Г.Г.ОНИЩЕНКО  4 марта 2004 года    Дата введения  с момента утверждения    4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ.  БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ    ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ МИКРООРГАНИЗМОВ  К АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫМ ПРЕПАРАТАМ    МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ  МУК 4.2.1890-04    1. Разработаны: Центральным научно-исследовательским институтом  эпидемиологи (Н.А.Семина, С.В.Сидоренко); Государственным научным  центром по антибиотикам (С.П.Резван, С.Л.Грудинина); Научно-  исследовательским институтом антимикробной химиотерапии Смоленской  государственной медицинской академии (Л.С.Страчунский, О.У.Стецюк,  Р.С.Козлов, М.В.Эйдельштейн); Кафедрой микробиологии и  химиотерапии Российской медицинской академии последипломного  образования (Е.А.Ведьмина, Л.Г.Столярова, И.В.Власова);  Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и  благополучия человека (З.С.Середа).  2. Утверждены и введены в действие Главным государственным  санитарным врачом Российской Федерации - Первым заместителем  Министра здравоохранения Российской Федерации Г.Г.Онищенко 4 марта  2004 г.  3. Введены взамен "Методических указаний по определению  чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом диффузии в  агар с использованием дисков", утв. Заместителем Главного  государственного санитарного врача СССР В.Е.Ковшило 10 марта 1983  г., N 2675-83.    1. Область применения    1.1. В настоящих Методических указаниях изложены стандартные  методы определения чувствительности микроорганизмов к  антибактериальным препаратам (методы серийных разведений и диско-  диффузионный метод).  1.2. Методические указания предназначены для применения в  микробиологических лабораториях учреждений государственной  санитарно-эпидемиологической службы и здравоохранения.    2. Общие сведения    Определение чувствительности микроорганизмов - возбудителей  инфекционных заболеваний человека к антибактериальным препаратам  (АБП) - приобретает все более важное значение в связи с появлением  и широким распространением антибиотико-резистентности у бактерий.  Стандартные методы определения чувствительности микроорганизмов к  АБП (диско-диффузионный и серийных разведений) были разработаны во  второй половине 60-х - начале 70-х годов XX века и с тех пор с  методической точки зрения не претерпели принципиальных изменений.  Однако внедрение в клиническую практику значительного  количества новых АБП и появление новых механизмов антибиотико-  резистентности у микроорганизмов потребовало более строгой  стандартизации процедуры тестирования, разработки новых подходов к  интерпретации результатов, внедрения современной системы  внутреннего контроля качества на каждом этапе исследования.  В настоящих Методических указаниях систематизированы  современные подходы к определению чувствительности бактериальных  возбудителей инфекционных заболеваний человека, учитывающие  рекомендации Европейского комитета по определению чувствительности  к антибиотикам, а также Национального комитета по клиническим  лабораторным стандартам США.  Исследования чувствительности микроорганизмов к АБП  осуществляются для решения следующих задач:  - обоснование целенаправленной индивидуальной антибактериальной  терапии для лечения конкретной инфекционной болезни отдельным  пациентам;  - обоснование эмпирической терапии отдельных нозологических  форм инфекционных болезней в пределах лечебных учреждений или  географических регионов;  - осуществление наблюдения за распространением антибиотико-  резистентности в отдельных учреждениях или географических  регионах;  - исследование новых химических соединений на наличие  антибактериальной активности.    3. Показания для исследования чувствительности  микроорганизмов к антибактериальным препаратам    В ходе повседневной деятельности в бактериологических  лабораториях из различных биологических материалов и объектов  внешней среды выделяют множество бактерий, относящихся к различным  таксономическим группам. Однако определение чувствительности  выделенных микроорганизмов к АБП показано далеко не во всех  случаях. Определение показаний для исследования чувствительности  микроорганизмов к АБП является обязанностью врача-бактериолога.  Определять чувствительность к АБП представителей нормальной  микрофлоры человека, при их выделении из естественных мест  обитания, бактерий, выделенных из объектов внешней среды, за  исключением случаев проведения специальных исследований,  нецелесообразно.  Обязательному исследованию на чувствительность к АБП подлежат  все микроорганизмы, выделенные из первично стерильных жидкостей,  органов и тканей человека. В остальных случаях оценке  чувствительности должна предшествовать оценка клинической  значимости выделенного микроорганизма.  Определение чувствительности выделенного штамма микроорганизма  показано, если уровень его устойчивости к АБП не может быть  предсказан на основании данных идентификации или вероятной  таксономической принадлежности микроорганизма. Практически важной  задачей является выявление приобретенной резистентности к АБП у  природно-чувствительных к ним микроорганизмов. Подтверждение  природной чувствительности или резистентности микроорганизма к АБП  не является целью практических исследований.  Исследованию по оценке антибиотикочувствительности подлежат  чистые культуры микроорганизмов или материал изолированных колоний  с плотных питательных сред после первичного посева образца  клинического материала, в последнем случае параллельно необходимо  провести идентификацию культуры.  При обнаружении на плотных питательных средах после первичного  посева смешанной культуры исследовать антибиотикочувствительность  до идентификации и оценки этиологической значимости отдельных  микроорганизмов нецелесообразно.  Прямое определение чувствительности с использованием  клинического материала (без выделения чистой культуры) возможно  только в исключительных случаях при условии подтверждения  однородности культуры и высокой степени обсемененности при окраске  по Граму, причем исследование следует повторить после выделения  чистой культуры микроорганизма.  Следует уделять особое внимание определению чувствительности  микроорганизмов, относящихся к таксономическим группам, для  которых характерна высокая частота распространения приобретенной  резистентности.  У микроорганизмов, проявляющих универсальную чувствительность к  каким-либо АБП, т.е. когда случаев резистентности не описано  (например, Streptococcus pyogenes - все штаммы чувствительны к  пенициллину), проводить определение чувствительности к этим  препаратам в повседневной практике нецелесообразно.  Факты выявления резистентности у микроорганизмов, для которых  этот феномен ранее не был описан в научной литературе, следует  оценивать с крайней осторожностью и рекомендуется обращаться за  консультациями в лаборатории, занимающиеся изучением антибиотико-  резистентности.  Не следует в практических целях исследовать микроорганизмы, для  которых методы определения чувствительности в настоящее время не  стандартизованы и отсутствуют критерии интерпретации результатов.  Результаты, полученные в данном случае, не могут служить  основанием для назначения антибактериального препарата, если  соответствующая нозологическая форма не приведена в утвержденной  инструкции по его применению.    4. Методы определения чувствительности  микроорганизмов к антибактериальным препаратам    4.1. Общая характеристика методов    Современные стандартизованные методы определения  чувствительности микроорганизмов к АБП подразделяют на методы  серийных разведений и диффузионные.  Методы серийных разведений основаны на прямом определении  основного количественного показателя, характеризующего  микробиологическую активность АБП - величины его минимальной  подавляющей концентрации (МПК).  МПК - минимальная концентрация, подавляющая видимый рост  исследуемого микроорганизма в бульонной культуре или на плотной  среде.  Для определения МПК заданные концентрации АБП вносят в  питательную среду, которую затем засевают культурой исследуемого  микроорганизма и после инкубации оценивают наличие или отсутствие  видимого роста.  В зависимости от характера используемой питательной среды  различают методы серийных разведений в агаре или в бульоне. В  зависимости от объема используемой жидкой питательной среды  выделяют методы серийных макро- и микроразведений.  Разновидностью метода серийных разведений является также метод,  основанный на использовании только двух концентраций АБП,  соответствующих пограничным значениям МПК (см. ниже). Этот принцип  исследования широко используется в автоматизированных системах для  определения чувствительности микроорганизмов.  Диффузионные методы определения чувствительности основаны на  диффузии АБП из носителя в плотную питательную среду и подавлении  роста исследуемой культуры в той зоне, где концентрация АБП  превосходит МПК.  В настоящее время существуют две основные модификации  диффузионного метода: диско-диффузионный и Е-тест.  В диско-диффузионном методе в качестве носителя АБП используют  бумажный диск. Образование зоны подавления роста происходит в  результате диффузии АБП из носителя в питательную среду. В  определенных пределах величина диаметра зоны подавления роста  обратно пропорциональна МПК. Однако диско-диффузионный метод  позволяет лишь косвенно судить о величине МПК, а результатом  исследования является отнесение микроорганизма к одной из  категорий чувствительности (чувствительный, промежуточный или  резистентный).  Е-тест представляет собой узкую полоску полимера (0,5 x 6,0  см), на которую нанесен градиент концентраций АБП (от минимальных  до максимальных). Подавление роста микроорганизма вокруг полоски Е-  теста происходит только в той зоне, где концентрация АБП,  диффундирующего из носителя, выше МПК, при этом образуется  каплевидная зона ингибиции. Значения концентрации АБП в каждом  участке носителя типографским способом нанесены на наружной  (обращенной к исследователю) поверхности Е-теста. Величину МПК  учитывают в том месте, где граница зоны подавления роста вплотную  подходит к носителю. Детальные инструкции по определению  чувствительности с использованием Е-тестов прилагаются  изготовителем к набору реактивов.    4.1.1. Основные этапы проведения тестирования    Оценка антибиотикочувствительности, независимо от конкретного  метода, предполагает последовательное выполнение нескольких  этапов:  - приготовление питательных сред;  - приготовление суспензии исследуемых микроорганизмов  (инокулюма);  - инокуляция;  - инкубация;  - учет и интерпретация результатов, формулировка рекомендаций  по лечению.  Диффузионные методы включают также этап наложения дисков или  полосок Е-теста на плотную питательную среду.    4.1.2. Приготовление питательных сред для определения  чувствительности    Для оценки чувствительности используют специально  предназначенные для этой цели среды, разрешенные к применению в  Российской Федерации в установленном порядке и по своим  характеристикам удовлетворяющие требованиям, приведенным в разделе  5. Внутрилабораторный контроль качества среды проводят при  использовании всех сред, разрешенных к применению в Российской  Федерации в установленном порядке.  Вид питательной среды для оценки чувствительности определяют  выбранным методом проведения исследования (агар или бульон), а  также видом тестируемого микроорганизма.  Выбранную питательную среду для определения чувствительности  готовят из сухой среды промышленного производства в соответствии с  инструкцией изготовителя. После автоклавирования питательную среду  сразу же разливают в стерильные пробирки или в чашки Петри или  (если необходимо) колбы со средой помещают на водяную баню при 48-  50 град. C, где выдерживают до достижения указанной температуры,  после чего в них асептически вносят термолабильные питательные  добавки и/или рабочие растворы антибиотиков, а затем разливают в  пробирки или в чашки Петри.  Агар разливают по чашкам слоем толщиной 4 мм (на чашку  диаметром 100 мм требуется 25 мл агара, на чашку диаметром 90 мм -  20 мл). Чашки оставляют при комнатной температуре для застывания.  Приготовленные указанным образом чашки Петри предпочтительнее  использовать немедленно. Допускается хранение в запаянных  полиэтиленовых пакетах в холодильнике при 4-8 град. C в течение 5  суток.    4.1.3. Приготовление суспензии исследуемых микроорганизмов  (инокулюма)    Общим и принципиально важным для всех методов тестирования  является стандартизация суспензии исследуемого микроорганизма, ее  8  концентрация должна составлять 1,5 x 10 КОЕ/мл. Практически  наиболее приемлемым методом оценки концентрации бактериальной  суспензии является измерение ее оптической плотности. Оптическая  8  плотность бактериальной суспензии с концентрацией 1,5 x 10 КОЕ/мл  при визуальном контроле соответствует стандарту мутности 0,5 по  Мак-Фарланду. Контроль оптической плотности суспензии можно также  осуществлять спектрофотометрически (денситометрически). Существуют  коммерчески доступные стандарты мутности и спектрофотометры.  Бактериальную суспензию можно готовить либо из бульонной, либо из  агаровой культуры.    Приготовление инокулюма из агаровой культуры    Для приготовления инокулюма используют чистую суточную культуру  микроорганизмов, выросших на плотных питательных средах. Отбирают  несколько однотипных, четко изолированных колоний, выросших на  неселективных плотных питательных средах. Петлей переносят  незначительное количество материала с верхушек колоний в пробирку  со стерильным физиологическим раствором или питательным бульоном,  доводя плотность инокулюма точно до 0,5 по стандарту Мак-Фарланда.  Инокулюм следует использовать в течение 15 мин. после  приготовления.    Приготовление инокулюма из бульонной культуры    При определении чувствительности быстро растущих бактерий с  обычными питательными потребностями для приготовления инокулюма  также можно использовать 5-6-часовую бульонную культуру  микроорганизма. Для этого отбирают несколько однотипных  изолированных колоний, петлей переносят незначительное количество  материала в пробирку с 4,0-5,0 мл жидкой неселективной питательной  средин, инкубируют при 35 град. C. Через 5-6 ч инкубации плотность  микробной суспензии приблизительно соответствует необходимой, и ее  точно доводят до 0,5 по Мак-Фарланду путем добавления стерильного  бульона или физиологического раствора.  Стандарт Мак-Фарланда может быть либо приобретен, либо  приготовлен в лаборатории.    4.1.4. Приготовление стандарта 0,5 по Мак-Фарланду    К 0,5 мл раствора ВаСl2 в концентрации 0,048 моль/л (1,175%  раствор ВаСl2 x 2 H2O) медленно при тщательном перемешивании  добавить 99,5 мл раствора H2SO4 в концентрации 0,18 моль/л (1%) до  получения гомогенной суспензии.  Правильность приготовления суспензии необходимо проверить на  спектрофотометре. Поглощение при использовании кюветы 1 см должно  составить 0,08-0,10 при длине волны 625 нм.  Полученную суспензию необходимо разлить по 4-6 мл в пробирки с  герметично закрывающимися крышками. Пробирки должны быть такого же  диаметра, как и используемые для приготовления бактериальной  суспензии.  Хранить пробирки с суспензией необходимо в темноте при  комнатной температуре.  Перед использованием пробирки необходимо тщательно встряхивать  и оценивать однородность суспензии. При появлении видимых частиц  пробирки изымаются из употребления.  Стандарт мутности необходимо обновлять или проверять его  оптическую плотность ежемесячно.    4.2. Методы серийных разведений    4.2.1. Приготовление растворов АБП для методов серийных  разведений    Общим и крайне важным этапом для всех методов серийных  разведений является приготовление растворов АБП. Различают  "основные" растворы АБП (пригодные для хранения) и "рабочие" - те,  которые необходимо использовать "ex tempore" для приготовления  питательных сред.  Для приготовления основных растворов АБП необходимо  использовать субстанции АБП с известной активностью, лекарственные  формы не пригодны. Для взвешивания субстанций необходимо  использовать электронные лабораторные весы с точностью до 4 знака,  для измерения объемов - калиброванные дозаторы и пипетки.  Основные растворы АБП готовят в концентрации 1000,0 мкг/мл и  выше. Навески АБП для приготовления базовых растворов готовят с  учетом их активности. Расчет навески АБП для приготовления  базового раствора проводят по формуле:    С (мкг/мл) x Vтеор. (мл)  m АБтеор. (мг) = ---------------------------,  А (содержание АБП в мкг/мг)    где:  m АБтеор. - расчетная (теоретическая) навеска АБП;  С - необходимая концентрация АБП;  Vтеор. - объем растворителя для растворения теоретической  навески;  А - активность АБП (количество активного вещества,  содержащегося в субстанции).  Взвесить точно расчетное количество порошка практически  невозможно. Поэтому готовят близкую к расчетной навеску, а затем  пересчитывают количество необходимого растворителя:    m АБпракт. (мг) x Vпракт. (мл)  Vпракт. (мл) = ------------------------------,  m АБтеор. (мг)    где:  Vпракт. - объем растворителя для растворения практической  навески;  m АБпракт. - полученная навеска АБП;  m АБтеор. - расчетная (теоретическая) навеска АБП;  Vтеор. - объем растворителя для растворения теоретической  навески.  В связи с тем, что АБП существенно различаются по  растворимости, в ряде случаев возникает необходимость использовать  различные вещества для первичного растворения (солюбилизации)  препаратов (растворители) и для доведения их до заданной  концентрации (разбавители). В тех случаях когда растворители и  разбавители являются разными веществами, для растворения АБП  необходимо использовать минимально возможное количество  растворителя.  Отличные от воды растворители и разбавители для отдельных АБП  приведены в табл. 1. Основные растворы необходимо хранить при  температуре не выше -20 град. C (сроки хранения отдельных АБП при  этой температуре существенно различаются). Оптимальными условиями  для хранения основных растворов АБП является температура -60 град.  C и ниже, длительность не более 6 месяцев. При этом необходимо  иметь в виду, что основные растворы бета-лактамных АБП могут  терять активность и в более ранние сроки.  После извлечения из холодильника перед открыванием флаконов с  основными растворами их необходимо довести до комнатной  температуры для предотвращения конденсации влаги. Размороженные  основные растворы должны быть использованы для приготовления  рабочих растворов, повторное замораживание не допускается. Для  приготовления рабочих растворов используется дистиллированная  вода.  Из рабочих растворов готовят двукратные разведения АБП. При  расчетах за основу берется конечная концентрация АБП в питательной  среде, равная 1,0 мкг/мл (более высокие - 2, 4, 8 и т.д.; более  низкие - 0,5; 0,25; 0,125 и т.д.). При этом реальные концентрации  растворов должны учитывать фактор разбавления раствора АБП при  приготовлении чашек с плотной питательной средой или при  инокуляции. Диапазон двукратных серийных разведений АБП зависит от  вида тестируемого микроорганизма, предполагаемой активности АБП и  целей исследования.    4.2.2. Метод серийных разведений в бульоне    Различают два основных варианта метода серийных разведений в  бульоне: макрометод (пробирочный) и микрометод (при величине  конечного объема 0,2 мл и меньше). Область применения макрометода  из-за низкой производительности ограничивается случаями  необходимости оценки чувствительности единичных штаммов.    Макрометод    Процедура    Тестирование проводят в объеме 1 мл каждого разведения АБП с  конечной концентрацией исследуемого микроорганизма примерно 5 х  5  10 КОЕ/мл.    Питательная среда    Питательный бульон для определения чувствительности разливают  по 0,5 мл в каждую пробирку. Количество пробирок определяют  необходимым диапазоном разведений АБП и увеличивают на одну для  постановки "отрицательного" контроля.    Приготовление серийных разведений АБП (рис. 1 <*>)    ------------------------------------  <*> Здесь и далее рисунки не приводятся.    Рабочий раствор АБП готовят из основного раствора с  использованием жидкой питательной среды. Концентрацию рабочего  раствора рассчитывают исходя из необходимой максимальной  концентрации в ряду серийных разведений, учитывая фактор  разбавления препарата при последующей инокуляции. Затем рабочий  раствор в количестве 0,5 мл при помощи микропипетки со стерильным  наконечником вносят в первую пробирку, содержащую 0,5 мл бульона.  Тщательно перемешивают и новым стерильным наконечником переносят  0,5 мл раствора АБП в бульоне во вторую пробирку, содержавшую  первоначально 0,5 мл бульона. Эту процедуру повторяют, пока не  будет приготовлен весь необходимый ряд разведений. Из последней  пробирки 0,5 мл бульона удаляют.  Таким образом, получают ряд пробирок с растворами АБП,  концентрации которых отличаются в соседних пробирках в 2 раза.  Одновременно готовят дополнительные ряды серийных разведений АБП  для тестирования контрольных штаммов. Серия разведений обязательно  должна включать в себя пограничные концентрации и допустимые  диапазоны МПК для контрольных штаммов.    Приготовление инокулюма и инокуляция    Для инокуляции используют стандартную микробную взвесь,  эквивалентную 0,5 по стандарту Мак-Фарланда, разведенную в 100 раз  на питательном бульоне, после чего концентрация микроорганизма в  6  ней составит примерно 10 КОЕ/мл.  По 0,5 мл инокулюма вносят в каждую пробирку, содержащую по  0,5 мл соответствующего разведения АБП, и в одну пробирку с 0,5 мл  питательного бульона без антибиотика ("отрицательный" контроль).  Конечная концентрация микроорганизма в каждой пробирке достигнет  5  необходимой - примерно 5 x 10 КОЕ/мл. Инокулюм должен быть внесен  в пробирки с разведениями АБП не позднее 15-30 мин. с момента  приготовления.    Инкубация    Пробирки закрывают стерильными ватно-марлевыми пробками или  металлическим колпачками и все пробирки с тестируемыми штаммами,  кроме пробирки "отрицательный" контроль, инкубируют в обычной  атмосфере при температуре 35 град. C в течение 16-20 или 20-24 ч  (в зависимости от вида тестируемого микроорганизма). Пробирку  "отрицательный" контроль помещают в холодильник при 4 град. C, где  хранят до учета результатов.    Учет результатов    Для определения наличия роста микроорганизма пробирки с  посевами просматривают в проходящем свете. Рост культуры в  присутствии АБП сравнивают с референтной пробиркой  ("отрицательный" контроль), содержащей исходный инокулюм и  хранившейся в холодильнике. МПК определяют по наименьшей  концентрации АБП, которая подавляет видимый рост микроорганизма.    Микрометод    Преимуществами микрометода является высокая производительность  и возможность длительного хранения заранее приготовленных планшет.  Тестирование проводят при величине конечного объема 0,2 мл и  меньше, что позволяет значительно сократить количество расходных  материалов. Методика не имеет отличий от макрометода, за  исключением используемых объемов питательного бульона с  разведениями антибиотиков и инокулюма, но требует дополнительного  оснащения лаборатории многоканальными пипетками, 96-луночными  планшетами для иммунологических исследований (с плоским дном) со  стерильными крышками.  Первым этапом является изготовление планшет, пригодных для  хранения. После внесения рабочих растворов антибиотиков в лунки,  запаянные в полиэтилен планшеты могут храниться при температуре  ниже -60 град. C до момента использования. Повторное замораживание-  оттаивание не допускается.  Для проведения исследования планшеты после извлечения из  холодильника выдерживают до достижения ими комнатной температуры,  после чего проводят инокуляцию приготовленной суспензией  исследуемого микроорганизма. При проведении инкубации планшет  обязательно должен быть закрыт крышкой для предотвращения  высыхания содержимого лунок.  Учет результатов проводят визуально или спектрофотометрически,  сравнивая рост микроорганизма в присутствии АБП с ростом культуры  в ячейке без АБП. За МПК принимают минимальную концентрацию,  обеспечивающую полное подавление видимого роста исследуемого  штамма.  Метод серийных микроразведений в бульоне легко поддается  модификациям для разработки тест-систем. При использовании тест-  систем, разрешенных к применению в Российской Федерации в  установленном порядке, следует пользоваться инструкциями  изготовителей.    Контроль качества    При постановке методов серийных разведений в бульоне необходимо  проводить контроль роста культуры в среде без АБП. Необходимо  также контролировать чистоту суспензии микроорганизма,  использованной для инокуляции, путем высева на неселективные  среды. Каждая партия тестируемых штаммов сопровождается внутренним  контролем качества исследования с использованием соответствующих  контрольных (референтных) штаммов.    4.2.3. Метод серийных разведений в агаре    Метод серийных разведений в агаре позволяет одновременно  определить МПК партии штаммов (от 15 до 30 клинических штаммов +  контрольные штаммы, в зависимости от используемой модели  инокулятора).    Процедура    Принцип метода заключается в посеве тестируемых микроорганизмов  на чашки Петри с агаром, содержащим последовательные двойные  разведения антибиотиков. Одновременно проводят тестирование партии  клинических штаммов и соответствующих контрольных штаммов, а также  контроль роста микроорганизмов на чашках без АБП и контроль  чистоты культуры путем высева образцов инокулюма на неселективные  питательные среды.    Приготовление серийных разведений АБП    Из основного раствора исследуемого АБП готовят рабочий раствор  в концентрации, в 10 раз превосходящей максимальную из  используемых в конкретном исследовании. Затем готовят серию  двукратных разведений рабочего раствора. Таким образом,  концентрация АБП в каждом последующем разведении должна быть в 2  раза меньшей, чем в предыдущем. Для приготовления серии разведений  используют любые стерильные химически инертные лабораторные  емкости с завинчивающимися крышками объемом не менее 10 мл (для  удобства размешивания).    Питательная среда    Сухую агаризованную питательную среду растворяют и  автоклавируют в соответствии с инструкцией изготовителя. После  автоклавирования колбы с питательной средой помещают на водяную  баню при 48-50 град. C, где выдерживают до достижения указанной  температуры, после чего в них асептически вносят рабочие растворы  антибиотиков (1 часть рабочего раствора АБП на 9 частей  расплавленного агара) и, при необходимости, термолабильные  питательные добавки. Затем среду тщательно перемешивают и  разливают по чашкам Петри, толщина слоя питательной среды должна  быть 3-4 мм.  Вторым способом приготовления чашек Петри с агаром, содержащим  разведения АБП, является смешивание питательной среды и раствора  АБП непосредственно в чашке Петри. Для приготовления стандартных  пластиковых чашек диаметром 90 мм необходимо к 2 мл раствора АБП  добавить 18 мл разогретого до 50 град. C жидкого агара. Чашки  предварительно маркируют с указанием препарата и его концентрации.  Очень важно тщательно перемешивать агар до того, как он начнет  застывать для равномерного распределения АБП по всей толще  питательной среды. Перемешивание производят на горизонтальной  поверхности последовательно плавными разнонаправленными круговыми  движениями чашки. После приготовления чашек агар должен затвердеть  в горизонтальном положении. Нельзя резко передвигать, переносить  чашки до полного застывания агара.  Параллельно с чашками Петри, содержащими растворы антибиотиков,  для контроля роста готовят чашки Петри без антибиотиков. Чашки  оставляют при комнатной температуре для застывания и подсушивания  на 10-12 ч.  Приготовленные указанным образом чашки Петри предпочтительнее  использовать немедленно, однако допускается хранение в запаянных  полиэтиленовых пакетах при 4-8 град. C в течение 5 сут. При этом  необходимо иметь в виду, что некоторые бета-лактамные антибиотики  (прежде всего, ампициллин, цефаклор, имипенем), особенно при  низких концентрациях, не выдерживают даже указанный срок хранения.  В этой связи стабильность антибиотиков в приготовленных в  лаборатории чашках Петри целесообразно устанавливать  экспериментально с использованием референтных штаммов.    Приготовление инокулюма и инокуляция    Конечная посевная доза исследуемого микроорганизма на  4  поверхности питательной среды должна составлять 10 КОЕ. Поскольку  коммерческие инокуляторы или стандартная бактериологическая петля  диаметром 3,0 мм переносят 1-2 мкл жидкости, концентрация  7  микроорганизмов в исходной суспензии должна быть 10 КОЕ/мл. Такую  концентрацию можно получить при разведении стандартной микробной  суспензии, соответствующей стандарту 0,5 по Мак-Фарланду, в 10  раз. Полученную суспензию необходимо инокулировать на поверхность  агара в течение 15 мин. после приготовления, при этом образуется  пятно диаметром 5-8 мм.  Для контроля качества приготовления суспензий периодически  рекомендуется проводить подсчет реальных колониеобразующих единиц  путем высева образца приготовленного инокулюма на неселективные  питательные среды.    Инкубация    После инокуляции чашки оставляют при комнатной температуре для  подсыхания, далее переворачивают и инкубируют при температуре 35  град. C в течение 18-24 ч (в зависимости от вида тестируемого  микроорганизма).    Учет результатов    Учет результатов проводят, поместив чашку на темную не  отражающую свет поверхность. За МПК принимают концентрацию,  вызвавшую полную ингибицию видимого роста. Для дифференцирования  нежного роста от налета, оставшегося после инокулята, в ряде  случаев целесообразно использовать увеличение. Появление  единственной колонии на чашке с концентрацией на 1 разведение  выше, чем явная МПК, можно не учитывать. Результат оценки  антибиотикочувствительности имеет смысл учитывать только при  подтверждении чистоты культуры (см. контроль качества).    Контроль качества    При постановке методов серийных разведений в агаре необходимо  проводить контроль роста культуры на чашке Петри с питательной  средой, не содержащей АБП. Важнейшим требованием контроля качества  является высев использованной для инокуляции суспензии на плотную  неселективную среду для подтверждения чистоты культуры! Каждая  партия тестируемых штаммов сопровождается внутренним контролем  качества исследования с использованием соответствующих контрольных  (референтных) штаммов.    4.2.4. Общие замечания по методам серийных разведений    Несмотря на то что методы серийных разведений являются наиболее  точными и информативными, их постановка в практических  лабораториях сопряжена со значительными методическим трудностями.  Прежде всего, речь идет о необходимости использования субстанций  антибиотиков с известным уровнем активности, строгого соблюдения  режимов хранения, тщательного выполнения контроля качества  питательных сред, трудоемкости приготовления рабочих растворов  антибиотиков.  Использование тест-систем на основе метода микроразведений  позволяет избегать трудоемких процедур по стандартизации  подготовительных этапов, но при этом обеспечивает получение  достоверных количественных результатов по уровню антибиотико-  резистентности. Весьма экономичным и простым в исполнении является  также вариант метода серийных микроразведений, основанный на  использовании двух пороговых концентраций, позволяющий получить  качественные результаты (т.е. распределить штаммы по  чувствительности на три категории).    4.3. Диско-диффузионный метод (ДДМ)    Принцип метода    ДДМ определения чувствительности основан на способности АБП  диффундировать из пропитанных ими бумажных дисков в питательную  среду, угнетая рост микроорганизмов, посеянных на поверхности  агара.    Питательная среда    Для определения чувствительности ДДМ используют такую же, как и  для метода разведений в агаре, питательную среду. К качеству  питательных сред для постановки диско-диффузионного метода  выдвигают те же требования, что и к плотным питательным средам для  постановки метода серийных разведений в агаре, соответственно  используют и те же методы контроля качества.  Приготовление чашек Петри с плотной питательной средой связано  с некоторыми особенностями. Плотную питательную среду готовят в  соответствии с инструкцией изготовителя. Важным моментом при  определении чувствительности ДДМ является толщина слоя агара в  чашке. Она должна составлять (4,0 +/- 0,5) мм, что достигается при  внесении в чашку Петри диаметром 90 мм строго 20 мл агара,  диаметром 100 мм - 25 мл агара, а диаметром 150 мм - 60 мл агара.  Перед заполнением расплавленной средой чашки Петри устанавливают  на строго горизонтальную поверхность (выверенную по уровню, без  впадин и выпуклостей). Соблюдение указанных предосторожностей  необходимо в связи с тем, что размер и форма зоны ингибиции роста  зависят от глубины и равномерности агарового слоя.  После заполнения чашки оставляют при комнатной температуре для  застывания. Хранить чашки можно запаянными в полиэтиленовые пакеты  при 4-8 град. C в течение 7-10 сут. При использовании  свежеприготовленных чашек или чашек после хранения в холодильнике  их необходимо подсушить перед инокуляцией, что достигается  инкубацией при 35 град. C с приоткрытой крышкой в течение 10-20  мин. Перед инокуляцией необходимо проконтролировать отсутствие  конденсата жидкости на внутренней поверхности крышек.    Диски с антибиотиками    Для определения чувствительности ДДМ следует использовать  только стандартизированные качественные диски. Изготовление дисков  с АБП, необходимых для определения чувствительности диско-  диффузионным методом, в лабораторных условиях нецелесообразно. Это  связано с жесткими требованиями к исходным материалам (субстанциям  АБП, картону) и со значительной трудоемкостью методов контроля  качества дисков.  Для получения правильных результатов определения  чувствительности ДДМ необходимо строго соблюдать правила хранения  и использования коммерческих дисков, в противном случае содержание  в них антибиотиков может снизиться ниже допустимого уровня (прежде  всего в результате увлажнения) еще до истечения срока годности.  Долговременное хранение дисков с АБП осуществляют в герметичной  упаковке в морозильной камере при температуре -18 град. C и ниже.  Небольшие партии дисков, используемые при повседневной работе,  можно хранить в холодильнике при температуре 4-8 град. C, плотно  укупоренными так, чтобы гарантировать невозможность попадания во  флакон влаги, кроме того для дополнительной защиты от влаги во  флаконах (картриджах) с дисками содержится специальный  влагопоглотитель (силикагель).  Флаконы (картриджи) с дисками следует извлекать из холодильника  за 1 ч до начала работы и выдерживать герметично закрытыми до  достижения ими комнатной температуры, что предотвращает  образование конденсата на дисках после открывания флаконов.    Приготовление бактериальной суспензии и инокуляция    При определении чувствительности ДДМ используют стандартный  инокулюм, соответствующий по плотности 0,5 по стандарту  8  Мак-Фарланда и содержащий примерно 1,5 x 10 КОЕ/мл. Инокулюм  следует использовать в течение 15 мин. после приготовления. Для  инокуляции приготовленных чашек с агаром можно использовать два  способа.  1. Наиболее удобным способом инокуляции является использование  стерильных ватных тампонов. Тампон необходимо погрузить в  стандартную суспензию микроорганизма, затем избыток инокулюма  удалить, отжав тампон о стенки пробирки. Инокуляцию проводят  штриховыми движениями в трех направлениях, поворачивая чашку Петри  на 60 град.  2. При использовании второго способа стандартный инокулюм  наносят пипеткой на поверхность чашки Петри с питательной средой в  объеме 1-2 мл, равномерно распределяют по поверхности  покачиванием, после чего удаляют избыток инокулюма пипеткой.  Приоткрытые чашки подсушивают при комнатной температуре в течение  10-15 мин.    Аппликация дисков и инкубация    Не позднее чем через 15 мин. после инокуляции на поверхность  питательной среды наносят диски с АБП. Аппликацию дисков проводят  с помощью стерильного пинцета или автоматического диспенсера.  Расстояние от диска до края чашки и между дисками должно быть 15-  20 мм. Таким образом, на одну чашку диаметром 100 мм следует  помещать не более 6 дисков с АБП. Диски должны равномерно  контактировать с поверхностью агара, для чего их следует аккуратно  прижать пинцетом.  Непосредственно после аппликации дисков чашки Петри помещают в  термостат кверху дном и инкубируют при температуре 35 град. C в  течение 18-24 ч (в зависимости от вида тестируемого  микроорганизма). Увеличение интервала времени между нанесением  дисков на поверхность среды и началом инкубации (а соответственно  - началом роста исследуемой культуры микроорганизма) приводит к  "преддиффузии" АБП в агар и к увеличению диаметра зоны подавления  роста.    Учет результатов    После окончания инкубации чашки помещают кверху дном на темную  матовую поверхность так, чтобы свет падал на них под углом в 45  град. (учет в отраженном свете). Диаметр зон задержки роста  измеряют с точностью до 1 мм, предпочтительнее пользоваться  штангенциркулем или кронциркулем.  При измерении зон задержки роста следует ориентироваться на  зону полного подавления видимого роста. Не следует обращать  внимания на очень мелкие колонии, выявляемые в пределах зоны 


Новости партнеров

Источник: lawrussia.ru


Leave a Comment

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

Этот сайт использует Akismet для борьбы со спамом. Узнайте как обрабатываются ваши данные комментариев.